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除了直接的熒光標簽如熒光素堿性蕊香紅、香豆素(Coumarin)或它們各自的衍生物外,最常使用的非放射性指示劑系統(tǒng)是用堿性磷酸酶(Alkaline Phosphatase,AP)作為標志酶。在簡單的一步反應(yīng)中,它與寡脫氧核苷酸直接結(jié)合,寡脫氧核苷酸的5’位置與AP的偶合是以雙功能鍵作為媒介。用辣根過氧化酶(Horseradish Peroxidase,HRP)直接標記寡核苷酸效率低,因此:HRP主要用于標記多核苷酸片段。直接標記的AP探針,能達到與放射性標記或間接非放射性標記寡核苷酸同樣高的特異性,這是因為AP雖然必須與每單個寡核苷酸探針結(jié)合,但是它省略掉間接系統(tǒng)中特定的探針修飾基團與相結(jié)合成分之間的結(jié)合反應(yīng),就是用AP修飾具有確定序列的寡核苷酸的例子。被檢測的樣品經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳和膜印跡后,所形成的序列梯狀帶能直接地被用AP催化的光學(xué)反應(yīng)或發(fā)光反應(yīng)觀察到。
這里主要以放射性核素豫P為例,介紹核酸探針與標記的連接方法(標記方法)。其他核素的標記方法與之相似,可參照此進行。
缺口平移法(Nick translation)的原理是:將DNA酶I(DNase I)的水解活力與大腸桿菌DNA聚合酶I(DNA pol I)5’→3’的聚合酶活力和5’→3’的外切酶活力結(jié)合。首先用適當濃度的DNase I在探針DNA雙鏈上造成缺口,然后再借助于E.coli的DNA pol I 5’→3’的外切酶活力,切去帶有5’-磷酸的核苷酸;同時又利用該酶的5’→3’聚合酶活力,使生物素或同位素標記的互補核苷酸補入缺口。DNA聚合酶I的這兩種活力交替作用,使缺口不斷向3’的方向移動,同時DNA鏈上的核苷酸不斷為標記的核苷酸所取代,成為帶有標記的DNA探針,經(jīng)純化除去游離的脫氧核苷酸,即成純化的標記DNA探針。缺口平移標記法可對環(huán)狀或線狀雙鏈DNA進行標記。
需要注意的是,DNase I活性控制到什么程度是缺口平移標記法成敗的關(guān)鍵,另外,缺口平移標記法產(chǎn)生的探針是雙鏈DNA,用時要預(yù)先變陛后再使用。
隨機引物(Random priming)是含有各種可能排列順序的寡聚核苷酸片段混合物,因此它可以與任意核酸序列雜交,起到聚合酶反應(yīng)的引物作用。目前市售的試劑盒中,隨機引物是用人工合成方法得到的,寡核苷酸片段長度為6個核苷酸殘基,含有各種可能的排列順序(46=4096種排列順序)。
將待標記的DNA探針片段變性后與隨機引物(一些六聚核苷酸)一起雜交,然后以此雜交的寡核苷酸為引物,在大腸桿菌DNA聚合酶I大片段(E.coli DNA polymer-rase I Klenow Fragment)的催化下,按堿基互補配對的原則,不斷在其3’-OH端添加同位素標記的單核苷酸(α一32P—dNTp)修補缺口,即形成放射性核素標記的DNA探針。
除能進行雙鏈DNA標記外,隨機引物法也可用于單鏈DNA和RNA探針的標記。當采用單鏈DNA片段或RNA作為模板時,必須注意所得到的標記探針并不是其本身,而是與其互補的單鏈DNA片段。如果需要其本身作為探針,則必須采用其互補鏈或雙鏈DNA作為模板。當以RNA為模板時,操作方法同上,但必須采用反轉(zhuǎn)錄酶,得到的產(chǎn)物是標記的單鏈cDNA探針。此法得到的探針放射活性極高,而高放射性會造成DNA鏈的破壞,因此標記的DNA探針應(yīng)立即使用。
單鏈DNA探針與雙鏈DNA探針相比,其雜交效率更高。這是由于雙鏈:DNA探針在雜交時,除與目的基固序列雜交外,雙鏈DNA探針兩條鏈之問還會形成自身的無效雜交;而單鏈DNA探針避免了這種缺點,主要適用于克隆于M13噬菌體中的DNA片段的標記。選用適當?shù)囊镆部捎糜谫|(zhì)粒DNA中插入順序的標記。
一般采用M13噬菌體體系進行單鏈DNA探針的標記。人工合成的寡核苷酸作為引物,首先與克隆了特異基因片段的M13噬菌體DNA雜交,在α-32P-dNTP的存在下,利用E.coli DNA polymerase I Klenow片段的鏈延伸反應(yīng),合成高放射性的單鏈DNA探針。用適當?shù)南拗菩詢?nèi)切酶切取所需探針序列,然后用變性膠電泳分離得到單鏈DNA探針。雙鏈RP型M13DNA也可方便地用于單鏈。DNA探針的制備,選擇適當?shù)囊锟傻玫较鄳?yīng)的正鏈或負鏈DNA單鏈探針。作為引物的寡核苷酸,一般采用互補于M13噬菌體多克隆位點3’端序列的“通用引物”(正鏈引物:5’-CACAATTCCACACAAC-3’,負鏈引物:5’-TCCCAGTCACGACGT-3’);也可以人工合成一段互補于插入序列的寡核苷酸片段作為引物。
來源于鳥類髓母細胞病毒(AMV)的反轉(zhuǎn)錄酶,是一種依賴于RNA的DNA聚合酶,具有多種酶促活性,包括5’→3’DNA聚合酶活性及RNA/DNA雜交體特異的RNase H酶活性。此酶主要應(yīng)用于將mRNA反轉(zhuǎn)錄成cDNA而應(yīng)用于cDNA克隆,亦可用于RNA或單鏈。DNA模板的強P標記探針的制備。當以poly(A)mRNA為模板時,反轉(zhuǎn)錄酶的引物可以是oligo-dT,也可采用特異的寡核苷酸引物,還可采用隨機寡核苷酸作為引物。反轉(zhuǎn)錄得到的產(chǎn)物:RNA/DNA雜交雙鏈經(jīng)堿變性后,RNA單鏈可被迅速降解成小片段,經(jīng)Sephadex G-50柱層析即可得到單鏈DNA探針。
人工合成的寡核苷酸片段作為分子雜交的探針,已日益為更多的研究者所青睞。利用寡核苷酸探針,可以檢測到靶基因上單個核苷酸的點突變。多種酶促反應(yīng)可用于寡核苷酸探針的末端標記,如T4多核苷酸激酶、Klenow DNA聚合酶、末端脫氧核苷酰轉(zhuǎn)移酶等。
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了解更多> >探針標記的目的是為了跟蹤探針的去向,確定探針是否與相應(yīng)的基因組DNA雜交,即顯示出與核酸探針具有同源性序列的精確位置,從而判斷陽性菌落的位置、靶核酸在細胞中的位置(原位雜交),或特異性片段的大小(轉(zhuǎn)移印跡雜交)等。
了解更多> >在實際測試工作中,如何選擇合適的標準物質(zhì)大都需要條件實驗的驗證。在主量元素測試中,例如,在進行Na和Al的測試時,我們實驗室一般采用硬玉(Na Al Si2O6)作為標準物質(zhì),這對大多數(shù)的硅酸鹽類礦物是適宜的,但是卻并不適用于Al2Si O5(藍晶石)的分析。這可能是因為后者較高的Al含量引起的基體效應(yīng)更顯著所致,因此選用單質(zhì)Al或者剛玉(Al2O3)作為測試Al的標樣會更合適。類似的,在Fe的測試中,一般采用赤鐵礦(Fe2O3)或黃鐵礦(Fe S2)作為標樣,但是在鈦鐵氧化物的測試中卻并不適用
了解更多> >實際應(yīng)用中,筆者已經(jīng)在洋底黑煙囪硫化物(白鐵礦等)的Au、Ag含量(品位)的討論中(Li et al.,2010),以及中高溫榴輝巖中金紅石的Zr含量及相關(guān)溫度計應(yīng)用中(李小犁等,2017)就此展開了相關(guān)研究,確保了相關(guān)科學(xué)問題不會因為數(shù)據(jù)樣本的有限性可能導(dǎo)致的結(jié)論偏差(即數(shù)據(jù)量不夠引起的偽跡),同時也避免了進行海量數(shù)據(jù)分析的浪費和非必要性。該方法主要用于證明本次實驗分析的樣本數(shù)量是合理的,并且由此計算得出的元素的平均含量是具有統(tǒng)計學(xué)上客觀性的。至于是否可以用于對儀器系統(tǒng)誤差或者測量(隨機)誤差
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