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干酪乳桿菌發(fā)酵及熱加工方式對小麥蛋白抗原性的影響(一)

發(fā)布時間:2021-09-08 15:18 編輯者:特邀作者周世紅

小麥過敏、乳糜瀉、非乳糜瀉小麥敏感(NCGS)等“小麥相關(guān)疾病”在世界各地的發(fā)病率在不斷上升。對于這些疾病患者而言。避免攝入小麥致敏蛋白是唯一且有效的方法圈。除探究過敏機制、尋找治療的突破點外,研發(fā)低致敏性的小麥食物成為當前亟待解決的問題。乳酸菌在發(fā)酵過程中通過自身的蛋白質(zhì)水解系統(tǒng)降解相關(guān)蛋白質(zhì)及多肽,并通過產(chǎn)酸改變發(fā)酵面團的pH值以激活面粉的內(nèi)源性蛋白酶.進一步加強蛋白質(zhì)的降解。在蛋白質(zhì)降解為多肽及氨基酸時,既改變了面團風味,也改變了致敏蛋白的含量。此外,乳酸菌代謝產(chǎn)生的抗真菌物質(zhì)可以延長產(chǎn)品貨架期,產(chǎn)生的胞外多糖可以改善面團的品質(zhì)。鑒于此,乳酸菌發(fā)酵作為一種很有前景的發(fā)酵方式,值得進一步的探究。乳酸菌種類繁多,目前對于其降低小麥蛋白抗原性的研究多集中于植物乳桿菌發(fā)酵方面。干酪乳桿菌被證實具有細胞被膜蛋白酶,而這種酶在降解蛋白質(zhì)的過程中起到很重要的作用。此外,大量研究表明加工方式影響食物蛋白的抗原性,目前用于降低食物蛋白抗原性的加工方法主要有熱加工(蒸煮、烘烤等)和非熱加工(發(fā)酵、酶解、超聲等)。蒸煮等熱加工方式會改變食物蛋白的構(gòu)象結(jié)構(gòu),從而改變抗原的構(gòu)象表位。而抗原蛋白線性表位的破壞主要發(fā)生在發(fā)酵和酶解過程中。Rao等研究發(fā)現(xiàn)低溫烘烤和水煮能夠產(chǎn)生較低致敏性的花生。Rui等利用植物乳桿菌發(fā)酵降低了大豆分離蛋白的抗原性。利用堿性蛋白酶和木瓜蛋白酶連續(xù)酶解降低了小麥中致敏谷蛋白含量。本研究利用分離自老面中的1株干酪乳桿菌發(fā)酵面團,研究其對小麥致敏蛋白含量及抗原性的影響,研究加工條件與抗原性之間的關(guān)系,為開發(fā)低致敏性小麥制品提供理論依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

革蘭氏染色試劑盒、細菌組DNA提取試劑盒、乳酸桿菌選擇性瓊脂、Bradfbrd蛋白濃度測定試劑盒、SDS-PAGE分離/濃縮膠緩沖液、預(yù)染蛋白Maker、SDS-PAGE蛋白上樣緩沖液、AP-羊抗兔二抗、BCIP/NBT堿性磷酸酯酶顯色試劑盒。北京索萊寶科技有限公司:EL-TMB顯色試劑盒,上海生工生物:試驗所用試劑均為分析純級,兔過敏血清由實驗室自制。

1.2 主要儀器

PCR熱循環(huán)儀,杭州晶格科學儀器有限公司;凝膠成像系統(tǒng),上海勤翔科學儀器有限公司;Mul-tiskanFC酶標儀,上海賽默飛公司;mini-proteanⅡ凝膠儀,美國伯樂公司。

1.3 試驗方法

1.3.1 干酪乳桿菌的分離鑒定

稱取酸面團樣品5g于無菌均質(zhì)袋中,加入45mL滅菌后的蛋白胨水(1%蛋白胨,0.43%NaCl,0.72%Na2HP04,0.36%KH2PH04,pH7.0),混勻后梯度稀釋,取10-5~10-7稀釋梯度,涂布于乳酸桿菌選擇性瓊脂培養(yǎng)基,37℃培養(yǎng)24h。隨機挑取菌落進行過氧化氫酶和革蘭氏染色試驗。取過氧化氫酶陰性、革蘭氏陽性且鏡檢為桿狀的菌株進行進一步分子鑒定。

采用細菌組DNA提取試劑盒提取所分離菌株的DNA,利用細菌通用引物27F(5’-AGCG-GATCACTTCACACAGGACTACGGCTACCTrGTACGA-3’)和1492R(5’-GCAGAGTTCTCGGAGT.CACGAAGAGTlTI’GATCCTGGCTCAG-3’)通過PCR反應(yīng)對16SrRNA基因進行擴增。PCR反應(yīng)條件為:94℃預(yù)變性5min:94℃變性30s。55℃退火30s,72℃延伸5min,35個循環(huán):72℃充分延伸10min。擴增產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳檢測后送于北京生工生物工程有限公司測序。所得序列與NCBI文庫比對后,用MegaX構(gòu)建進化樹。

1.3.2 菌株生長曲線和菌落數(shù)與0D值對應(yīng)關(guān)系的測定

取一支凍存菌種于MRS液體培養(yǎng)基中,37℃下活化24h。取O.5mL活化菌液于6個分別裝有30mLMRS肉湯的三角瓶中。37℃培養(yǎng)0,4,8,12,16,20h,在波長600nm處測量各時段菌液吸光度值,繪制生長曲線。

取活化菌液用MRS肉湯稀釋2,2.5,3,4,5,6倍,測定0D600nm值,并梯度稀釋,傾注于MRS瓊脂中,37℃培養(yǎng)48h后計算活菌數(shù)。

1.3.3 酸面團的制備

取指數(shù)生長期菌液,6000×g離心10min,生理鹽水洗滌2次,雙蒸水重懸浮至50mL,調(diào)節(jié)OD‰值為0.8。100g面粉與50mL菌懸液投入和面機。和面15min,面團內(nèi)菌體數(shù)量約為108CFU/g。發(fā)酵溫度30℃,相對濕度80%。發(fā)酵24h,定時取樣。

1.3.4 發(fā)酵過程中pH值、可滴定酸度(TTA)和面團蛋白含量的測

每隔2h取樣,于無菌均質(zhì)袋中10倍稀釋后混合均勻,測定pH值并用0.1mol/LNa0H滴定至pH值為8.3,記錄所消耗Na0H的體積數(shù)即,TTA值。

將發(fā)酵面團樣品凍干后磨粉于-20℃保存。蛋白提取參照Prado等的方法。具體操作如下:向500mg面粉中加入10mL%s-HCl緩沖液(50mm01,L,pH8.8),于4℃下攪拌1h,20000×g,4℃離心20min,收集上清液(清蛋白和球蛋白);沉淀用5mL緩沖液洗滌3次,加入10mL75%乙醇,室溫下攪拌1h,離心20min,收集上清液(醇溶蛋白);采用5mL75%乙醇洗滌沉淀3次,加入10mL50mmol/LTris-HCl(pH8.8,1%SDS,0.5%DTT),4℃攪拌2h,離心20min,收集上清液(谷蛋白)。采用考馬斯亮藍法測蛋白質(zhì)質(zhì)量濃度。

1.3.5 SDS-PAGE電泳及免疫印跡分析

參照Rao等的方法,具體操作如下:制備12%的分離膠和5%的濃縮膠,樣品溶液稀釋為相同濃度后與5x上樣緩沖液混合并沸水加熱5min,進樣后進行垂直電泳(濃縮膠電壓80V,分離膠電壓110V),電泳結(jié)束后采用考馬斯亮藍R250染色,脫色后于凝膠成像系統(tǒng)拍照。

未染色的電泳膠轉(zhuǎn)移至硝酸纖維素膜上(300mA冰浴下轉(zhuǎn)膜90min),麗春紅染色確認轉(zhuǎn)膜成功。加入5%脫脂奶粉,搖床上搖動封閉2h;加入稀釋的-抗(抗小麥蛋白兔血清),4℃下孵育過夜;TBST緩沖液(0.02mol/LTBS,0.05%Tween-20,pH7.6)洗膜后,加入稀釋的AP-羊抗兔二抗,室溫下孵育90min;洗膜后。利用BCIP/NBT堿性磷酸酯酶顯色試劑盒顯色。

1.3.6 不同發(fā)酵方式及熱加工方法制作饅頭

向100g面粉(乳酸菌菌落數(shù)108~109CFU/g)中加入50mL菌懸液和0.35g安琪酵母調(diào)制面團后分別發(fā)酵。冷藏發(fā)酵條件為:4℃發(fā)酵3d后于37℃,80%相對濕度發(fā)酵60min:一次發(fā)酵條件為:37℃,80%相對濕度發(fā)酵60min;二次發(fā)酵條件為:中種面團(60g面粉,0.35g酵母,30mL菌懸液)于37℃發(fā)酵4h后加入40g面粉和20mL水繼續(xù)發(fā)酵1h。發(fā)酵好的3種面團用于烤制(180℃,20min)和蒸制(沸水蒸制20min)。取樣凍干,磨粉備用。

1.3.7 蛋白含量及酶聯(lián)免疫吸附試驗測

總蛋白提取參照Akagawa等的方法,具體操作如下:25mg面粉加入1mL蛋白提取液[40mmol/LTris,8mol/L尿素,4%3-[3-(膽酰胺丙基)二甲氨基]丙磺酸內(nèi)鹽(cHAPs),冰浴下超聲提取30s,6次;4℃下16000×g離心20min,收集上清液,考馬斯亮藍法測蛋白質(zhì)量濃度。

采用酶聯(lián)免疫吸附試驗評價樣品抗原性。使用50mmol/L,pH9.6的碳酸鹽緩沖液稀釋蛋白至5μg/mL,按100μL孔加入酶標板,4℃靜置過夜;用TBST洗板4次,按150μL/孔加入1%BSA封閉液,37℃溫育2h;TBST洗板后按100μL/孔加入使用1%BSA稀釋的抗小麥蛋白兔血清稀釋液(1:10000),37℃溫育2h,洗板;按100μL/孔加入500倍稀釋的羊抗兔HRP-IgG,37℃溫育1h,洗板;使用TMB顯色試劑盒顯色,于波長450nm處測0D值。

1.4 數(shù)據(jù)分析

試驗數(shù)據(jù)用SPSS軟件處理,圖由GraphPadPrism繪制。

聲明:本文所用圖片、文字來源《中國食品學報》,版權(quán)歸原作者所有。如涉及作品內(nèi)容、版權(quán)等問題,請與本網(wǎng)聯(lián)系

相關(guān)鏈接:小麥革蘭氏染色試劑盒,乳酸桿菌選擇性瓊脂,過氧化氫

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